Bifidobacterium bifidum : une bactérie du microbiote à mieux connaître

Bifidobacterium bifidum nous invite à découvrir un monde discret et passionnant : celui des micro-organismes qui vivent dans notre intestin. Cette bactérie possède une histoire, des ressources préférées et différentes façons d’interagir avec son environnement. Ses relations avec le mucus et les autres habitants du microbiote en font un sujet particulièrement intéressant pour les chercheurs.

Du nom de la bactérie aux essais cliniques, cette fiche propose un parcours accessible pour comprendre ce qui la distingue. Vous découvrirez aussi sa place dans les Ferments Lactiques MVN, avec leur composition actuelle et leurs conseils de prise. Le fil conducteur est simple : une espèce, une souche identifiée et une préparation apportent chacune une information différente.

1. Identifier Bifidobacterium bifidum

Le nom comporte deux niveaux : Bifidobacterium désigne le genre et bifidum l’espèce. Les bifidobactéries appartiennent à la famille des Bifidobacteriaceae. La revue de Turroni et ses collaborateurs les décrit comme des bactéries à Gram positif, c’est-à-dire présentant une certaine organisation de leur enveloppe révélée par une méthode de coloration. Ce terme microbiologique n’est pas un classement entre bactéries utiles et nuisibles.

Le genre possède une histoire scientifique ancienne. La revue rappelle l’isolement de bifidobactéries dans les selles d’un nourrisson allaité à la fin du dix-neuvième siècle. Les méthodes ont beaucoup évolué depuis : la culture permet de faire pousser des micro-organismes dans des conditions définies, tandis que les analyses génétiques donnent accès à leur identité et à certaines de leurs capacités. Ces approches apportent des renseignements complémentaires.

Dans le langage courant, on rencontre l’abréviation B. bifidum. Elle raccourcit le nom de genre lorsque le contexte est clair, mais n’ajoute aucune précision sur la souche. Une souche est une lignée bactérienne particulière, souvent reconnue par un code de lettres et de chiffres. PRL2010 et MIMBb75 sont, par exemple, des identifiants rencontrés dans les publications consultées.

Cette précision est essentielle pour lire la littérature. Deux souches d’une même espèce peuvent partager certaines caractéristiques et différer sur d’autres, notamment dans leurs gènes ou leur comportement expérimental. Dire qu’une préparation contient B. bifidum renseigne donc son identité au niveau de l’espèce. Pour la rapprocher d’un essai clinique, il faut aller jusqu’au code de souche et aux caractéristiques de la préparation employée.

2. Une habitante du microbiote, pas un personnage isolé

Le microbiote intestinal est un ensemble de micro-organismes vivant dans un environnement donné. Le dossier de l’Inserm décrit un écosystème comprenant des bactéries, mais aussi des virus et des champignons. Sa composition varie entre les individus et au cours de la vie. Une espèce comme B. bifidum doit donc être située dans cet ensemble, et non présentée comme la bactérie qui résumerait à elle seule la digestion.

Les bifidobactéries occupent une place particulièrement importante dans le microbiote de nombreux nourrissons. La revue de Turroni décrit B. bifidum parmi les espèces rencontrées tôt dans la vie et également détectées chez l’adulte. Elle ne justifie pas de la présenter comme universellement prédominante dans le côlon de tous les adultes. L’âge, l’alimentation, les méthodes d’analyse et les différences personnelles influencent les descriptions obtenues.

Le côlon offre un environnement différent de celui de l’estomac : les conditions d’acidité, de disponibilité des nutriments et d’oxygène ne sont pas les mêmes. Les bifidobactéries sont adaptées à des environnements pauvres en oxygène ; leur sensibilité à celui-ci compte aussi lorsqu’on cherche à les cultiver ou à fabriquer une préparation. L’écologie intestinale et la technologie de fabrication se rencontrent ainsi autour d’une même question : dans quelles conditions ces bactéries peuvent-elles vivre ?

Enfin, les bactéries observées dans les selles ne décrivent pas parfaitement toute la communauté présente au contact de la muqueuse. Une analyse fécale fournit un échantillon dans un contexte donné. Les prélèvements de muqueuse, les cultures et les recherches de matériel génétique explorent d’autres aspects. Il faut garder cette différence lorsqu’une publication parle de fréquence, d’abondance ou de présence d’une espèce.

3. Comprendre ses relations avec le mucus intestinal

La paroi intestinale n’est pas une surface nue. Elle comporte notamment un revêtement de mucus, dont les mucines sont des constituants importants. Ces grandes molécules portent des chaînes de sucres, appelées glycanes. Elles participent à l’organisation de l’environnement au contact des cellules et constituent aussi des ressources que certains micro-organismes savent exploiter.

La revue de Turroni développe les capacités de B. bifidum à utiliser des glycanes provenant de l’hôte, en particulier autour de la souche PRL2010. Des analyses de génome, de protéines et d’expression des gènes permettent d’examiner les enzymes impliquées dans ces transformations. Certaines interviennent à l’extérieur de la cellule bactérienne, d’autres dans les étapes d’utilisation des fragments obtenus.

Le mot « dégradation » peut être trompeur hors de son contexte biologique. Ici, il désigne la transformation de molécules par des enzymes. Il ne signifie pas automatiquement une lésion de l’intestin. Le mucus est un milieu dynamique, produit et renouvelé par l’organisme. Pour comprendre ce que fait une bactérie, les chercheurs examinent à la fois l’utilisation de cette ressource, les réponses des cellules et les conditions dans lesquelles l’interaction se déroule.

Le mucus forme ainsi un milieu de rencontre entre les ressources de l’hôte et les capacités des bactéries. La revue explore les enzymes et les réponses cellulaires pour comprendre ces interactions. On découvre un système en mouvement, dans lequel production du mucus, transformations moléculaires et échanges biologiques se répondent. Ces mécanismes expérimentaux ne démontrent pas qu’un complément reconstruit la barrière intestinale.

4. Adhésion, présence et implantation : trois idées différentes

Pour interagir avec son environnement, une bactérie dispose de structures à sa surface. La revue décrit notamment des pili, sortes d’appendices protéiques, étudiés chez certaines souches de B. bifidum. Ils peuvent intervenir dans l’adhésion à des composants présents au contact des cellules intestinales. Ces travaux aident à comprendre comment une bactérie rencontre son milieu et s’y attache dans un modèle expérimental.

Une adhésion observée sur une culture cellulaire ne correspond pas directement à une implantation permanente chez une personne. Les modèles en laboratoire simplifient volontairement la situation pour étudier un mécanisme. L’intestin vivant comporte un transit, des sécrétions, des aliments, une immunité locale et une communauté microbienne déjà présente. Chacun de ces éléments peut modifier le devenir d’une préparation ingérée.

Il faut aussi distinguer détection et activité. Retrouver un micro-organisme, ou son matériel génétique, dans un échantillon ne dit pas toujours s’il est vivant, en quelle quantité il agit ou combien de temps il restera présent. Pour répondre à ces questions, les chercheurs associent différentes techniques et choisissent des moments de prélèvement. Une seule mesure ne raconte pas toute l’histoire.

La recherche sur l’adhésion offre une manière très concrète d’observer les contacts entre une bactérie et son milieu. Les chercheurs peuvent comparer des souches, modifier une structure de surface puis mesurer les différences obtenues. La présence naturelle de l’espèce et le passage d’une préparation ingérée restent deux situations distinctes : l’implantation définitive ne se déduit pas d’une simple adhésion en laboratoire.

Des outils pour découvrir une bactérie autrement

La génomique étudie l’ensemble du matériel génétique. Elle permet de repérer des gènes susceptibles de coder des enzymes ou des structures de surface. Pour Bifidobacterium bifidum, la revue présente notamment les travaux sur PRL2010, une souche isolée chez un nourrisson. Ce point de départ donne accès à un répertoire de capacités possibles, que les expériences vont ensuite explorer.

La présence d’un gène ne raconte cependant pas toute son utilisation. Les chercheurs examinent aussi les ARN produits, puis les protéines et les transformations observées. Ces approches portent respectivement sur l’expression génétique et sur les éléments qui participent au fonctionnement de la cellule. Les confronter permet de relier une information présente dans le génome à une activité dans des conditions définies.

On peut comparer ce travail à la lecture de plusieurs niveaux d’un même dossier : les capacités annoncées par la séquence, les outils effectivement produits et les résultats mesurés. Ce n’est pas une simple liste de bactéries. La microbiologie cherche à comprendre comment une cellule utilise ses ressources, répond à un changement et entre en contact avec d’autres organismes.

Les sucres du mucus, une architecture à explorer

Le mot glycanes désigne une grande variété d’assemblages. Leur structure dépend des sucres présents et de la manière dont ils sont reliés. La revue décrit notamment le fucose, le galactose et des sucres portant des groupements particuliers dans les chaînes associées aux mucines. Ces différences créent autant de liaisons à reconnaître pour les enzymes bactériennes.

Une enzyme n’intervient pas indistinctement sur toutes les liaisons. Les chercheurs identifient donc des familles d’enzymes, puis examinent les étapes auxquelles elles peuvent participer. Certaines transformations commencent à la surface ou à l’extérieur de la bactérie. Des fragments peuvent ensuite être transportés vers l’intérieur, où d’autres étapes métaboliques prennent le relais. Cette organisation explique l’intérêt de regarder aussi les transporteurs.

Les travaux sur PRL2010 relient ainsi enzymes et transport dans un même portrait fonctionnel. La bactérie n’est plus décrite seulement par son nom : elle est étudiée comme un organisme équipé pour utiliser certaines ressources de son milieu. Les comparaisons entre génomes aident ensuite à distinguer des caractéristiques largement partagées et des particularités propres à certaines souches.

La science avance aussi en réexaminant ses explications

La revue donne un exemple instructif avec la protéine BopA. Son rôle dans l’adhésion avait d’abord été proposé, puis réévalué par d’autres expériences. Une adhésion importante peut dépendre d’autres éléments. Cette évolution illustre le travail scientifique ordinaire : une première observation ouvre une piste, et de nouveaux tests viennent préciser l’explication plutôt que figer définitivement le mécanisme.

Les pili offrent un autre angle de recherche. Ces appendices sont assemblés à partir de protéines et certaines expériences examinent leur contact avec des composants de la matrice extracellulaire. Le milieu dans lequel on mesure l’adhésion compte donc autant que la structure observée. Une comparaison devient informative lorsqu’on sait ce qui a été changé et ce qui a été mesuré.

Ce portrait fait de Bifidobacterium bifidum une porte d’entrée particulièrement riche dans le microbiote. On découvre à la fois une habitante de l’intestin, des adaptations moléculaires et des méthodes de recherche complémentaires. Les essais chez l’humain ajoutent ensuite une autre dimension : ils examinent une préparation précise dans une situation définie, avec un résultat qui doit rester attaché à son protocole.

De la culture au portrait d’une communauté

Faire pousser une bactérie demande de choisir un milieu, une température et une atmosphère adaptés. Pour les bifidobactéries, la maîtrise de l’oxygène est particulièrement importante. La revue décrit cette sensibilité comme une difficulté pour la recherche et la fabrication. Une bactérie bien adaptée à l’intestin ne se multiplie pas nécessairement facilement dans les conditions ordinaires d’un laboratoire.

La culture apporte pourtant une possibilité précieuse : disposer de cellules pour les observer et réaliser des expériences. Les méthodes fondées sur le matériel génétique ouvrent une autre fenêtre. Elles repèrent des séquences dans un prélèvement, y compris lorsque les conditions de culture sont difficiles. Les résultats se complètent, mais ne mesurent pas exactement la même chose.

Une communauté intestinale peut ainsi être décrite par les noms détectés, leurs proportions ou certaines fonctions potentielles. Le choix de la question vient avant l’interprétation du résultat. Savoir qu’une espèce est présente ne renseigne pas à lui seul les transformations qui se produisent, ni la relation avec un symptôme. Les analyses fonctionnelles cherchent justement à enrichir ce premier inventaire.

Pourquoi les expériences indiquent une souche et un modèle

Le modèle représente la situation étudiée : une culture de cellules, un animal ou des participants humains. Chacun permet d’aborder une échelle différente. Un modèle cellulaire facilite la modification d’un paramètre, tandis qu’un essai clinique examine un ensemble de réponses dans un organisme et un contexte de vie beaucoup plus complexes.

Les travaux sur les structures de surface peuvent, par exemple, comparer une bactérie portant un appendice avec une préparation qui ne le porte pas. La différence observée aide à formuler une explication. Pour passer à une autre souche ou à une autre préparation, il faut vérifier que les caractéristiques pertinentes sont effectivement présentes. Le nom d’espèce constitue le début de l’identification, pas la description entière.

Les deux essais cliniques présentés ci-dessous prolongent ce parcours à leur manière. Le premier examine une souche vivante ; le second une préparation inactivée. Leur lecture montre comment les chercheurs font évoluer une question et choisissent de nouveaux critères. Cette progression rend le sujet plus intéressant qu’une liste de bénéfices : elle raconte une recherche en construction, avec des résultats précis et des interrogations encore ouvertes.

5. Les échanges avec les cellules immunitaires

Le microbiote et le système immunitaire entretiennent des échanges permanents. L’Inserm et la revue de Belkaid et Hand expliquent notamment le rôle de ces interactions dans l’apprentissage de la reconnaissance des micro-organismes et dans la tolérance. L’intestin doit gérer des contacts nombreux avec les aliments et les microbes ; sa réponse n’est pas simplement une défense qu’il faudrait augmenter sans discernement.

Les cytokines sont des molécules de communication entre cellules. Elles interviennent dans différents processus, dont les réponses immunitaires et inflammatoires. Dans les expériences, les chercheurs peuvent mesurer leur production après exposition à une bactérie, à un élément de sa surface ou à une préparation. Un changement observé n’est pas forcément favorable ou défavorable dans toutes les circonstances : son interprétation dépend du modèle et de l’ensemble de la réponse.

La revue consacrée à B. bifidum rapporte des profils différents selon les souches et les expériences. Elle décrit des recherches sur des cellules, sur l’animal et sur des molécules bactériennes particulières. Certains travaux portent sur les cellules dendritiques, d’autres sur l’expression de gènes au contact de cellules intestinales. Cette diversité rend une formule générale comme « diminue les cytokines inflammatoires » trop simplificatrice.

Ces recherches dessinent un dialogue plutôt qu’une commande unique. Une même famille de molécules peut participer à plusieurs réponses selon la cellule, le modèle et les conditions. Suivre ces différences permet de comprendre comment une hypothèse se construit, avant d’être examinée dans un essai clinique. Les observations expérimentales ne démontrent pas une prévention des infections par les préparations commerciales.

6. L’essai de 2011 avec la souche MIMBb75

Un essai randomisé publié en 2011 a évalué B. bifidum MIMBb75 chez des personnes présentant un syndrome de l’intestin irritable. D’après le résumé consulté, 122 participants ont été répartis entre la préparation étudiée et un placebo pendant quatre semaines. Le protocole en double aveugle signifie que l’attribution était masquée afin de limiter l’influence des attentes sur l’évaluation.

Les chercheurs ont suivi la sévérité des symptômes et des mesures de qualité de vie. Le résumé rapporte des résultats favorables pour le groupe recevant MIMBb75, notamment sur l’évaluation globale des symptômes. Il indique un soulagement jugé adéquat chez 47 % des participants de ce groupe, contre 11 % dans le groupe placebo. Ces proportions décrivent un critère et une population définis.

Il faut distinguer ce résultat d’une garantie individuelle. Tous les participants n’ont pas répondu de la même manière, et l’étude portait sur des personnes sélectionnées dans le cadre d’un diagnostic. Une gêne digestive occasionnelle, une maladie inflammatoire intestinale et un syndrome de l’intestin irritable ne sont pas des situations interchangeables. Le nom du diagnostic, la durée et la préparation font partie des données nécessaires pour comprendre le résultat.

Le code MIMBb75 permet de suivre le parcours de cette préparation dans la littérature. Les données cliniques rejoignent alors une identité précise, un protocole et des critères annoncés. C’est ce lien entre l’identité et l’expérience qui rend le résultat interprétable. Les autres préparations portant seulement le nom d’espèce ne peuvent pas être considérées comme équivalentes à partir de cette seule mention.

7. L’essai de 2020 : une préparation inactivée par la chaleur

Une autre étude a examiné une préparation de MIMBb75 inactivée par la chaleur, désignée HI-MIMBb75 ou SYN-HI-001. Le changement est important : les cellules administrées étaient non viables. Il ne s’agissait donc pas simplement de reprendre l’essai précédent avec le même produit vivant. La préparation et la question scientifique avaient évolué.

Le résumé décrit un essai multicentrique randomisé en double aveugle, mené dans vingt centres en Allemagne. Au total, 443 participants ont été répartis entre deux groupes pendant huit semaines. La préparation apportait un total quotidien d’un milliard de cellules non viables. Ce chiffre ne correspond pas à un milliard d’UFC vivantes et ne doit pas être converti automatiquement dans cette unité.

Le critère principal combinait une réduction d’au moins 30 % de la douleur abdominale et un soulagement adéquat des symptômes globaux pendant au moins quatre des huit semaines. Il a été atteint par 34 % des participants du groupe étudié contre 19 % du groupe placebo. L’intérêt de présenter ce critère est de montrer ce que recouvre le mot « amélioration » dans une publication : une définition précise, pas une impression générale.

Ces résultats ouvrent une question passionnante : quels composants bactériens peuvent participer aux interactions, même lorsque les cellules ne sont plus viables ? Le protocole ne rend pas équivalentes les formes vivantes et inactivées. Il décrit une préparation déterminée, dans une population sélectionnée, avec ses exclusions médicales. L’étude indique un financement par Synformulas, élément à intégrer à sa lecture critique.

8. Vivant, fermenté, probiotique : lire les termes précisément

Le consensus scientifique ISAPP de 2014 reprend une définition du probiotique reposant sur trois éléments : des micro-organismes vivants, administrés en quantité adéquate, et un bénéfice de santé. Cette définition donne un cadre de travail aux chercheurs. La simple présence d’un nom bactérien dans une liste d’ingrédients ne fournit pas toutes ces informations.

Un produit fermenté renvoie à une transformation par des micro-organismes et leurs activités. Selon sa fabrication et sa conservation, il ne présente pas nécessairement la même composition microbienne au moment de la consommation. Un aliment, une culture utilisée pour fabriquer cet aliment et un complément en gélules se décrivent chacun avec leurs propres renseignements. Le vocabulaire commun ne rend pas leurs contenus équivalents.

La préparation inactivée de l’essai de 2020 montre encore un autre cas : des cellules non viables peuvent être étudiées pour un objectif particulier. Il faut donc décrire ce qui a réellement été administré, plutôt que regrouper automatiquement toutes les préparations bactériennes sous une seule étiquette. Les études de viabilité et les essais cliniques répondent à des questions différentes.

Pour suivre les publications, cinq repères suffisent déjà : le nom complet, le code de souche, la quantité, la forme et la population étudiée. Ils permettent de relier chaque résultat à son expérience. La définition scientifique du probiotique appartient à ce vocabulaire de recherche ; elle ne constitue pas, à elle seule, une autorisation d’allégation commerciale pour un produit.

9. Ce que les UFC et la conservation renseignent

UFC signifie unités formant colonie. Le comptage estime les micro-organismes capables de former des colonies dans des conditions de culture définies. Il s’agit d’une mesure liée à la viabilité et à la méthode employée. Elle ne correspond ni au poids de la poudre ni à une photographie de tous les micro-organismes présents dans une préparation.

Une indication de quantité doit être rapprochée de sa portion : par gélule, par deux gélules ou par prise quotidienne. Il faut également savoir si le chiffre concerne l’ensemble d’une association ou chaque composante. Un total ne révèle pas automatiquement la part de B. bifidum parmi plusieurs noms bactériens. Sans cette répartition, on ne peut pas reconstituer la dose d’une souche par une simple division.

Le moment auquel la quantité est annoncée compte également. Une mesure à la fabrication et une garantie jusqu’à la fin de conservation prévue ne répondent pas à la même question. Les bactéries vivantes peuvent être sensibles à des contraintes de température, d’humidité et d’oxygène. La revue de Turroni souligne notamment les difficultés technologiques liées à la sensibilité de B. bifidum.

Les instructions du produit déterminent donc le rangement approprié. Il ne faut pas choisir systématiquement le réfrigérateur ni, à l’inverse, supposer que toutes les préparations se conservent sans précaution à température ambiante. L’emballage, la formulation et les indications du fabricant font partie du dispositif de conservation. Garder le flacon d’origine conserve les renseignements utiles : composition, date, numéro de lot et conditions prévues.

10. Remettre l’alimentation à sa juste place

L’alimentation participe à l’environnement du microbiote. Le dossier de l’Inserm explique notamment que les micro-organismes utilisent des ressources issues des aliments, parmi lesquelles des fibres. Mais leur communauté fonctionne comme un réseau : tous ne consomment pas les mêmes substrats et une transformation réalisée par l’un peut modifier les ressources disponibles pour d’autres.

L’avoine, les fruits et les légumes de l’illustration rappellent la place des repas dans cet environnement. Ils ne représentent pas un menu ciblant exclusivement Bifidobacterium bifidum. Les ressources étudiées pour cette espèce comprennent aussi des glycanes provenant de l’hôte. Cette particularité montre que les relations entre alimentation et microbiote passent par plusieurs chemins, au-delà de l’idée d’un aliment nourrissant une seule bactérie.

Dans la vie courante, une alimentation variée se construit avec les aliments disponibles et la tolérance individuelle. Une personne qui remarque une gêne peut noter ce qu’elle mange et les circonstances, sans retirer brutalement plusieurs familles alimentaires. Les symptômes digestifs ont des causes multiples ; les attribuer d’emblée à une absence de bifidobactéries risque de détourner l’attention de la question réellement posée.

La diversité alimentaire permet surtout de garder des repas variés, agréables et adaptés à ses possibilités. Les connaissances sur le microbiote enrichissent ce regard, sans demander de compter les espèces dans chaque assiette. Une soupe de légumes avec un accompagnement, un fruit apprécié ou une préparation à base d’avoine sont des idées ordinaires à ajuster selon les goûts et la tolérance.

11. Bifidobacterium bifidum dans les Ferments Lactiques MVN

Les Ferments Lactiques donnent une place concrète à Bifidobacterium bifidum dans la gamme Ma Vie Naturellement. La formule l’associe à trois autres dénominations bactériennes : Lactobacillus lactis, Lactobacillus casei et Lactobacillus acidophilus. Chaque nom ouvre son propre parcours de découverte ; les quatre sont réunis dans un flacon pratique de 60 gélules.

Les huit milliards d’UFC décrivent bien la portion quotidienne totale. Ils ne constituent pas la quantité de Bifidobacterium bifidum seule et ne se répartissent pas automatiquement en quatre parts égales. Le code de souche n’étant pas annoncé, la composante MVN n’est pas identifiée comme MIMBb75 ou PRL2010. La composition se présente avec ses propres informations de quantité et de prise.

À découvrir avec les Ferments : la formule Albilow

Albilow réunit quatre plantes et du zinc dans un flacon distinct. Une gélule apporte 150 mg d’extrait d’écorce de cannelle, 50 mg d’extrait de partie aérienne fleurie d’échinacée dont 4 mg de polyphénols, 30 mg d’extrait de bulbe d’ail noir dont 30 µg de S-allyl-cystéine, 20 mg d’extrait de feuille de thym et 10 mg de zinc sous forme de bisglycinate.

Son conseil d’emploi est d’une gélule par jour avec un verre d’eau. Le flacon de 60 gélules à 34,45 € représente donc 60 jours de contenu. Les deux préparations proposent des compositions distinctes : une association de dénominations bactériennes pour les Ferments, quatre plantes et un minéral pour Albilow.

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Les formats du duo ne se terminent pas en même temps : 20 jours pour les Ferments Lactiques, 60 jours pour Albilow aux doses recommandées. Ces repères décrivent le contenu des flacons, sans fixer une durée minimale commune de cure. L’offre groupée conserve les instructions de chaque référence ; aucun cumul avec l’offre individuelle des Ferments n’est annoncé ici.

À retenir : une espèce intéressante, des préparations à identifier

Bifidobacterium bifidum offre un exemple particulièrement instructif des relations entre une bactérie et son environnement intestinal. Les travaux sur les glycanes, l’adhésion et la communication avec les cellules montrent la richesse de ces interactions. Les essais avec MIMBb75 ajoutent des données cliniques, à lire avec leur préparation, leurs participants et leurs critères précis.

Dans les Ferments Lactiques MVN, Bifidobacterium bifidum rejoint trois autres dénominations dans une portion totale de huit milliards d’UFC pour trois gélules. Une prise avant chacun des trois repas permet d’organiser les 20 jours du flacon. La découverte peut se poursuivre avec les autres fiches de la formule et l’offre associée à Albilow, en gardant les précautions regroupées ci-dessus.

FAQ : Bifidobacterium bifidum et ses préparations